Gestisci la cura del tuo animale e usa il protocollo
Al fine di utilizzare gli animali per la ricerca, l'insegnamento o la sperimentazione, l'utilizzatore di animali deve adempiere a tutti gli obblighi associati a questo privilegio. Questi obblighi includono:
Strutture chirurgiche ARF
I requisiti generali per la chirurgia, sopravvivenza e non sopravvivenza, per tutte le specie sono descritti in un riassunto dettagliato, "Linee guida chirurgiche generali". Un secondo riassunto intitolato "Linee guida chirurgiche sui roditori" descrive informazioni e requisiti specifici per la chirurgia che coinvolge roditori di laboratorio.
Linee guida per la chirurgia di sopravvivenza
La chirurgia di sopravvivenza, indipendentemente dalla specie, deve essere condotta in modo asettico. Le procedure chirurgiche su specie non roditrici, più grandi del ratto da laboratorio, devono essere condotte in strutture chirurgiche dedicate (struttura chirurgica ARF). I requisiti generali per la chirurgia, sopravvivenza e non sopravvivenza, per tutte le specie sono descritti in un riassunto dettagliato, "Linee guida chirurgiche generali". Un secondo riassunto intitolato "Linee guida chirurgiche sui roditori" descrive informazioni e requisiti specifici per la chirurgia che coinvolge roditori di laboratorio. In generale, la tecnica asettica, l'anestesia e l'analgesia appropriate, un adeguato monitoraggio intraoperatorio del paziente e le disposizioni per l'assistenza postoperatoria sono requisiti minimi per condurre un intervento chirurgico di sopravvivenza in tutte le specie. I principi della chirurgia asettica riguardano: sterilizzazione degli strumenti, preparazione del chirurgo, preparazione del sito chirurgico e tutte le procedure chirurgiche dall'incisione cutanea alla chiusura. Il monitoraggio dell'anestesia è imperativo e deve essere documentato in specie più grandi di topi e ratti.
Linee guida per la chirurgia non di sopravvivenza (terminale, acuta)
La chirurgia non di sopravvivenza è definita come un intervento chirurgico condotto in anestesia generale e il paziente non è guarito dall'anestesia. L'eutanasia viene eseguita al termine delle procedure chirurgiche sperimentali, solitamente con un'overdose di anestetico, somministrato per via endovenosa. Le procedure di non sopravvivenza richiedono l'uso di strumenti puliti e disposizioni per un adeguato monitoraggio della profondità dell'anestesia.
Procedure minori come iniezioni, somministrazione orale, osservazioni, pesatura, ecc. possono essere eseguite nelle stanze degli animali. L'ARF fornisce sale per le procedure con anestesia inalatoria, camere di induzione, coni nasali, dispositivi di evacuazione dei gas di scarico e unità di recupero per quelle procedure in cui l'anestesia può essere desiderabile per la contenzione o l'immobilizzazione, come raccolta di sangue, biopsie, iniezioni endovenose, ecc.
La manipolazione e il contenimento di tutti gli animali, ma soprattutto dei roditori, è un'abilità sviluppata dalla pratica e da un addestramento adeguato. Gli animali devono essere immobilizzati in modo gentile, fermo e rapido al fine di ridurre al minimo il potenziale di stress e danni sia a chi è trattenuto che a chi lo tiene. L'ARF offre workshop "pratici" per le persone che richiedono un'introduzione ai metodi di contenzione adeguati.
Tutti gli alloggi e l'allevamento degli animali da ricerca sono forniti dal personale dell'ARF in accordo con il Guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio. Se un protocollo approvato IACUC descrive condizioni abitative non standard, il personale ARF deve essere informato dell'esenzione. Una procedura operativa standard (SOP) deve essere sviluppata dal ricercatore, approvata dal veterinario ARF e affissa nella stanza degli animali. Se il PI si assume la responsabilità dell'allevamento degli animali, deve essere affisso nella stanza un registro/foglio di registrazione che registri le attività di allevamento svolte dal personale di ricerca.
Eutanasia degli animali da laboratorio
L'eutanasia è l'atto di indurre una morte umana. Negli animali da laboratorio, l'eutanasia è più comunemente l'endpoint di qualsiasi esperimento. È imperativo che i ricercatori conducano l'eutanasia nel rispetto della vita dell'animale e con la consapevolezza che dolore, ansia e angoscia devono essere ridotti al minimo durante la procedura. La tecnica impiegata per l'eutanasia dovrebbe garantire una rapida incoscienza, seguita dalla cessazione delle funzioni cardiache e respiratorie e, infine, dalla perdita dell'attività cerebrale. Qualunque sia il metodo scelto, è necessario considerare la riduzione dello stress e dell'ansia associati alla procedura. Le linee guida sull'eutanasia dell'American Veterinary Medical Association hanno compilato un rapporto nel 2020. Questo rapporto contiene linee guida specifiche per ciascuna specie e metodi accettabili di eutanasia. Visualizza questo rapporto su: http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. Per eseguire l'eutanasia sugli animali, l'individuo deve essere adeguatamente formato e competente nella procedura. I metodi di eutanasia devono essere dettagliati nel protocollo di cura e utilizzo degli animali approvato da IACUC. I metodi utilizzati devono includere misure per garantire che si sia verificata la morte; che non vi è alcuna possibilità per l'animale di riprendersi e riprendere conoscenza. La formazione è disponibile tramite l'ARF o l'Ufficio per la cura e la conformità degli animali.
Eutanasia di feti e neonati di topi e ratti
I feti tardivi e i roditori neonatali sono in grado di provare dolore e angoscia. Occorre prendere in considerazione ulteriori requisiti per eseguire l'eutanasia umanitaria di feti e neonati tardivi. Il Consiglio consultivo per la ricerca sugli animali NIH ha sviluppato linee guida per l'eutanasia di feti e neonati roditori. Rivedere queste raccomandazioni per determinare metodi accettabili di eutanasia per feti e neonati di topo e ratto.
Eutanasia dei roditori con anidride carbonica
L'asfissia da anidride carbonica è il metodo più comune impiegato per l'eutanasia di piccoli roditori (ad es. topi e ratti). Deve essere impiegata una metodologia adeguata per ridurre il potenziale di ansia, angoscia e dolore associati ad alte concentrazioni di CO2. Il Consiglio consultivo per la ricerca sugli animali del NIH ha pubblicato Linee guida per l'eutanasia dei roditori con anidride carbonica. L'ARF ha pubblicato queste raccomandazioni come SOP (procedura operativa standard) nell'ARF vicino alle stazioni di CO2. Se CO2 l'eutanasia viene utilizzata nei laboratori di ricerca, il PI deve richiedere l'attrezzatura adeguata all'ARF e pubblicare le SOP fornite dall'ARF.
L'Animal Resource Facility autorizza l'accesso. Il Policlinico Universitario rilascia le carte d'identità e HSC Lock Shop Technologies rilascia le chiavi.
L'Animal Resource Facility autorizza l'accesso. Il Policlinico Universitario rilascia le carte d'identità e HSC Lock Shop Technologies rilascia le chiavi.
L'ARF è responsabile di TUTTO l'approvvigionamento di animali da ricerca. TUTTE le richieste di animali e tutti gli ordini di animali DEVONO essere effettuati SOLO dall'ufficio ARF. Tutte le richieste e richieste di utilizzo di animali devono essere indirizzate all'ufficio ARF. Le procedure per l'approvvigionamento degli animali sono dettagliate di seguito:
Per ricevere animali da un altro istituto accademico o di ricerca, il trasferimento deve essere prima approvato dal veterinario curante HSC ARF. L'approvazione si basa sulla determinazione dello stato di salute e SPF (Specific Pathogen Free) degli animali. Per completare questa valutazione, il veterinario HSC ARF deve esaminare un Rapporto di sorveglianza sanitaria, che deve essere fornito dal personale veterinario dell'istituto di origine. Procedure di trasferimento degli animali:
Tutti gli animali mantenuti all'interno della ARF devono essere mantenuti in base a un protocollo di cura e utilizzo degli animali approvato IACUC. Se desideri trasferire animali da un protocollo all'altro, devi sapere quali sono i numeri del protocollo animale. Se gli animali vengono trasferiti da un IP all'altro, su protocolli approvati, devono essere disponibili i nomi ei numeri di protocollo degli IP.
La scelta del modello animale appropriato si baserà su diversi fattori legati alla natura della malattia o del problema di salute. Il ruolo della genetica, suscettibilità alle malattie, dimensioni; e le somiglianze anatomiche e fisiologiche dovrebbero essere tutte considerate nella scelta dell'animale più adatto agli obiettivi della ricerca. Il personale veterinario è a disposizione per consulenze per assistere il ricercatore nella scelta corretta. I principi della ricerca umana sugli animali impongono che il ricercatore scelga la specie meno senziente disponibile che sia appropriata per gli obiettivi della ricerca.
Topi e ratti sono diventati i modelli animali più comuni nella ricerca biomedica dal completamento dei progetti sul genoma di uomo, topo e ratto. I seguenti siti sono consigliati per la disponibilità del genotipo e le informazioni sul fenotipo. Questi siti contengono informazioni utili per decidere un modello animale appropriato:
Il programma di ricerca sugli animali HSC è registrato come struttura di ricerca presso l'USDA (85-R-0014), ha una lettera di garanzia in archivio con PHS/OLAW (A3350-01) ed è pienamente accreditato dall'Associazione per la valutazione e l'accreditamento di Laboratory Animal Care International (file dell'unità di accreditamento AAALAC n. 000222).
L'ARF è accreditato AAALAC e aderisce a tutte le disposizioni della politica PHS sulla cura e l'uso degli animali da laboratorio, la Guida per la cura e l'uso degli animali da laboratorio, la legge sul benessere degli animali e i regolamenti di attuazione.
Per la presentazione di proposte agli NIH che coinvolgono animali vertebrati, il "Foglio di lavoro per la revisione della sezione animali vertebrati (VAS)" (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) dovrebbe essere fatto riferimento per garantire che siano fornite le informazioni necessarie sul programma sugli animali. NIH ha pubblicato ulteriori linee guida per la preparazione del VAS (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf), datata 18 gennaio 2012. Inoltre, ARF fornisce un modello standard per supportare le informazioni richieste ai sensi dei paragrafi 3-5 del presente Lista di controllo piastra caldaia ARF.
L'UNM HSC mantiene 40,000 piedi quadrati. dello spazio della struttura per le risorse animali (ARF), diretto da Kevin O'Hair, DVM che è certificato dal College of Laboratory Animal Medicine (ACLAM) e membro della facoltà del dipartimento di Patologia, School of Medicine. L'ARF si trova al piano terra contiguo del Basic Medical Sciences Building (BMSB) e del Biomedical Research Facility (BRF). L'ARF viene mantenuto come una struttura specifica priva di agenti patogeni (SPF) essenziale per la ricerca scientifica attuale e allo stato attuale e contiene strutture di barriera specializzate per l'allevamento di topi da laboratorio. L'ARF fornisce anche supporto tecnico e veterinario per tutti i progetti educativi e di ricerca che utilizzano animali da laboratorio. L'ARF comprende aree di ricovero per animali e aree di uso speciale come sale per trattamenti, laboratori procedurali, imaging, aree di ricerca per l'esposizione a rischio biologico e chimico, sale operatorie e camere di ricovero per roditori. Il programma di cura degli animali è supportato da Christie Wilcox, AS, RLATG, Operations Manager e uno staff di sei tecnici per animali da laboratorio.
Strutture specializzate:
Tutti gli animali dell'Health Sciences Center sono alloggiati nelle strutture gestite dalla Animal Resources Facility (ARF). I locali di stabulazione degli animali sono sotto controllo di temperatura e umidità. La struttura è diretta da un veterinario a tempo pieno, Tara G. Ooms Konecny, DVM, DACLAM (direttore dell'ARF e veterinario assistente) e composta da un supervisore della struttura (RLATG), 3 tecnici senior per la cura degli animali (LAT) e 7 tecnici per la cura degli animali; o il direttore dell'ARF o un veterinario clinico di emergenza è sempre disponibile. Il personale addetto alla cura degli animali esegue le procedure di allevamento di routine (p. es., pulizia della gabbia, alimentazione e abbeveraggio) e controlla gli animali quotidianamente per valutarne le condizioni. Le schede della sala di osservazione clinica vengono compilate giornalmente dal personale addetto alla cura degli animali e inviate al responsabile operativo. Questi rapporti vengono inoltrati al veterinario quando vengono segnalati problemi clinici. Il personale di laboratorio monitora gli animali quando vengono somministrati i trattamenti e i singoli punteggi delle condizioni post-procedurali degli animali vengono registrati quando ritenuto necessario in base alla morbilità prevista e come richiesto dai rispettivi protocolli approvati dalla IACUC. Il personale veterinario controlla gli animali nelle loro gabbie domestiche, bisettimanalmente o immediatamente quando vengono segnalati problemi clinici dal personale addetto alla cura degli animali o di laboratorio. se gli animali mostrano segni di infezione, malattia o sofferenza, il personale veterinario si consulta con il personale di laboratorio per raccomandare antibiotici, analgesici o altri prodotti farmaceutici/terapie di supporto appropriati. Il veterinario può intervenire o raccomandare l'eutanasia sulla base di preoccupazioni per il benessere degli animali.
Il direttore dell'ARF è responsabile dell'amministrazione del Programma di assistenza veterinaria, della supervisione della gestione delle strutture, della supervisione, della formazione e della conformità. Il programma di cure veterinarie include disposizioni per la sorveglianza sanitaria di tutti gli animali, specifici programmi di garanzia della qualità per le popolazioni di roditori, un programma di test di quarantena e linee guida specifiche per il trattamento.
Il direttore dell'ARF fornisce anche revisione e consulenza veterinaria per tutti i protocolli educativi e di ricerca presentati al Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali.